Három tipp (és két trükk) a BLAST

használatához az alapvető helyi igazítási kereső eszköz (BLAST) algoritmus a Nemzeti Biotechnológiai Információs Központon (NCBI) keresztül elérhető online erőforrások ingyenes csomagjának középpontjában áll. Míg a legtöbb kutató tudatában van a BLASTNAK, mint szekvencia-Igazító eszköznek, az NCBI BLAST suite sokkal többet kínál! Részletesen kitérek arra, hogyan használhatom ezeket az erőforrásokat egyetlen nukleotid polimorfizmus (SNP) megtalálására egy génben; Primer-blasztos primerek tervezése; és alapozó célok érvényesítése.

Tip One: Hogyan lehet megtalálni az SNP-ket

tekintettel az SNP-k fontosságára mind a betegségben, mind a kutatásban, az NCBI eszközöket biztosít a gén bejelentett SNP-jeinek összegyűjtéséhez. Az SNP-k megtalálásához kezdje el az NCBI honlapján, majd írja be az érdeklődő génjét a keresősávba. Válassza ki az SNP-t az összes adatbázis legördülő menüből a keresősáv bal oldalán, az alábbiak szerint:

három tipp (és két trükk) a BLAST
Ezután válassza ki a világos piros VarView gombot bármelyik eredmény alatt:
Három Tippek (Két Trükköt) Használatával ROBBANÁS
Ez hozza fel jelentett-annotált SNPs a lekérdezés gén, ami jön a kezed, ha, például, vagy primerek tervezése használt SNP genotipizálási vagy a klónozás rekombináns enzimek.

Trick One: szűrnie kell az eredményeket, hogy csak klinikailag kapcsolódó eredményeket nézzen? LÉPJEN az SNP lista jobb oldalán található szűrők feliratú megjelenítő dobozba a megfigyelt variáció alatt. Miután kiválasztotta a szűrő opciót, feltétlenül nyomja meg a Frissítés gombot.

három tipp (és két trükk) a BLAST

tipp két: Hogyan tervezzünk primerek

NCBI biztosít Primer-BLAST automatikus tervezése primerek alapján egy lekérdezési sorrendben. A primerek tervezésének megkezdéséhez keresse fel a BLAST honlapját, majd görgessen le a Primer-BLAST opcióhoz a Specialized BLAST alatt. Adja meg a célsorozatot cut-and-paste vagy, ha szerepel az NCBI adatbázisaiban, csatlakozási számként. Az alábbiakban néhány testreszabási lehetőséget fedek le, de ezen a ponton alapozókat hozhat létre további testreszabás nélkül!

tartomány: a szekvencia megadásához szükséges doboz jobb oldalán megadhatja annak a célnak a pontos tartományát (5′ – től 3′ – ig számozva, a szekvencia kezdetétől), amelyet figyelembe kell venni az előre-hátra alapozók tervezéséhez.

használja a saját forward primert (5′ – >3 ‘ on plus strand): válassza ezt, ha már tervezte a primereket, és szeretné, hogy a Primer-BLAST néhány elemzést (pl. Tm) biztosítson róluk.

PCR Termékméret: itt állítsa be a PCR termékek elfogadható hosszúságainak tartományát.

# a primerek vissza: ez beállítja a kívánt számú jelölt készlet primers figyelembe venni. Vegye figyelembe, hogy ez nem garancia, különösen akkor, ha a paraméterei túl szigorúak vagy értelmetlenek (például megadott egy terméket a PCR Termékméret alatt, amely nem lehet több, mint 500 bp, de a tartomány alatt csak 1 kb-nál nagyobb alapozókat szeretne figyelembe venni).

Primer olvadási hőmérséklet: Ez lehetővé teszi, hogy adja meg a Tm (egy gyors frissítő olvadási hőmérséklet, nézd meg a tippeket qPCR rendszeres PCR primer kialakítás).

Exon junction span: ha ki akarja zárni a genomikus DNS-t (ahol az exonokat nem kódoló intronok osztják el), akkor állítsa ezt alapozónak kell lennie egy exon-exon csomópontra.

specificitás ellenőrzés: hacsak nem akarja, hogy a Primer-BLAST visszatérjen a célon kívüli alapozókhoz (általában nem ajánlott!), hagyja ezt ellenőrizni, és adja meg a szervezet a minták jönnek, valamint, hogy melyik adatbázist kell használni, attól függően, hogy ha célzás mRNA, gDNA, stb .. A specificitás ellenőrzésének engedélyezésével a Primer-BLAST kizárja azokat az alapozókat, amelyek erősíthetnek valamit a célsorozaton kívül.

Splice variant handling: ha ezt az opciót választja-csak akkor lehetséges, ha mRNS-szekvenciákkal dolgozik -, akkor a Primer-BLAST nem zárja ki azokat az alapozópárokat, amelyek felerősíthetik a cél több mRNA splice változatát. Ez azonban nem jelenti azt, hogy primer párokat fog adni, amelyek magukban foglalják az összes ismert splice változatot! Csak lazítasz a cél kritériumokon.

miután megadta a szekvenciát, és szükség szerint testre szabta, görgessen le az oldal aljára, majd az új grafikus nézet használatának ellenőrzése után nyomja meg a Get Primers gombot. Ez vissza fog térni egy térképet, ahol a javasolt primer párok felerősíti a cél, valamint az analytics az alapozók: a hossza, pontos helyszín, megfelelő Tm van, GC% – a, illetve pontszámok tükröző egyéni kiegészítő (a 0.00 tükröző nem előre complementation).

tipp három: hogyan lehet megjósolni Primer célok

hogyan lehet ellenőrizni, ha a primerek hit semmit off-cél? Menj a Primer-robbanás. A lekérdezés mezőbe írja be a forward primert (5′ to 3′). Most írja be a 20 N-t egymás után, hogy a primereket különálló, nem átfedő nyomvonalakra bontsa. Miután a N írja be a reverse primer (is 5′ 3′), az alábbiak szerint:

Három Tippek (Két Trükköt) Használatával ROBBANÁS
Most meg kell határozni, hogy milyen adatbázis(ok) lesz ROBBANÁS a primerek ellen. Egy emberi gént céloz meg, és emberi DNS-sel dolgozik? Ezután az adatbázis alatt ellenőrizze az emberi genomikus + átiratot. A lehetőségek azonban nem korlátozódnak ezekre az egyszerű emberekre vagy egérre; ha más mintával – például azonosítatlan bélbaktériumokkal-dolgozik, válasszon másokat (nr, stb.), majd válassza ki az adatbázist a legördülő menüből közvetlenül az alábbi lehetőségek (a bélbaktériumok például 16S riboszomális RNS szekvenciák). Ha dolgozol, az egyes fajok kívül az emberi vagy az egér (például, patkány vagy nyúl), válassza ki azok között, az első három lehetőség szerint Más Adatbázisok: Nukleotid gyűjtemény, Referencia RNS szekvenciák (alkalmas RT-PCR primerek), valamint Referencia-genomikus szekvencia.

miután megkapta az eredményeket, ellenőrizze, hogy vannak-e bizonyos kombinációk. Ha a forward primer igazítja az előre strand (jegyzetekkel ellátott Strand Plus/Plus), a reverz primer igazítja, hogy ugyanaz a hit, de a fordított strand (Strand Plusz/Mínusz), akkor a primerek lehet erősíteni, hogy a hit.

Trick Two: az eredmények olyan dolgokat tartalmaznak, amelyek valószínűleg nem szennyezték a PCR-mintákat, például olívapáviánok és neandervölgyiek? Ha emberi vagy egérmintákkal dolgozik, győződjön meg róla, hogy rendelkezik az adatbázis alatt megadottakkal. Alternatív megoldásként kizárhat bizonyos fajokat.

References and Additional Resources:

Blast Tips. 2007. NCBI. <http://www.ncbi.nlm.nih.gov/feed/rss.cgi?ChanKey=blasttips>

Frequently Asked Questions. NCBI BLAST Help. <http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/Blast.cgi?CMD=Web&PAGE_TYPE=BlastDocs&DOC_TYPE=FAQ>

Madden T. The BLAST Sequence Analysis Tool. 2003. <http://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK21097/>

Mount DW. Using the Basic Local Alignment Search Tool. 2004. Cold Spring Harbor Protocols. <http://cshprotocols.cshlp.org/content/2007/7/pdb.top17.full>

Wheeler D and Bhagwat M. BLAST QuickStart. 2007. Humana Press Inc. <http://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1734/>

Ez segített Önnek? Akkor kérjük, ossza meg a hálózat.

írta: Megan Cartwright
kép hitel: jin.thai

Vélemény, hozzászólás?

Az e-mail-címet nem tesszük közzé. A kötelező mezőket * karakterrel jelöltük